EL TARWI.
Se considera apropiado para los niños en etapa de
crecimiento, mujeres embarazadas o que dan de lactar. Combinado con
cereales como
la quinua o amaranto, es capaz de reunir las cualidades de la leche, la carne,
el queso y el huevo. Industrialmente la harina de tarwi que se usa
hasta en 15 % en la panificación, por la ventaja de mejorar
considerablemente el valor proteico y calórico el producto.
USOS
• Alimenticio: Se utiliza, desmargada, en guisos, en purés, en
salsas, cebiche serrano, sopas (crema de tarwi); guisos (pepian),
postres (mazamorras con naranja) y refrescos (jugo de papaya con harina de
tarwi).
• Medicinal: Los alcaloides (esparteína, lupinina, lupanidina,
etc.) se emplean para controlar ectoparasitos y parasitos
intestinales de los animales.
• Agronómica: En estado de floración la planta se incorpora
a la tierra como abono
verde, con buenos resultados mejorando la cantidad de materia organica,
estructura y retención de humedad del
suelo. Como combustible casero los residuos de
la cosecha(tallos secos) se usan como combustible por su gran cantidad de
celulosa que proporciona un buen poder calorífico.
Nutrición
Las semillas son excepcionales nutritivas. Las proteínas y el
aceite Constituyen mas de la mitad de su peso, un estudio hecho en 300
diferentes genotipos de semillas muestra que la proteína contenida varia
de 41 a 51 %. El aceite (cuyo contenido es inversamente proporcional al del
anterior) varía de 24 a 14%. Quitandole la
cascara a la semilla y moliendo el grano se obtiene una harina
constituida por 50% de proteínas. La proteína del
tarwi contiene cantidades adecuadas de lisina y cistina, pero tiene
únicamente 23 a 30% de la metionina requerida para el óptimo
crecimiento de los animales. El aceite de tarwi es de color claro lo cual lo
hace aceptable para el uso doméstico. Es similar al aceite de maní y es relativamente rico en
acidos grasos no saturados, incluyendo el acido linoleico.
Materiales y métodos
Se recogieron abejas de 60 colonias de distintas zonas de Creta (Chania,
Rethymno, Heraklio y Lasithi). Los sitios de muestreo
estan presentandos en la Figura 1. Las
poblaciones de abejas melíferas de estas zonas corresponden a la raza
A.m. adami, según el analisis morfométrico (RUTTNER,
1988).
Comisión Permanente de Biología Apícola
Figura 1 - Sitios de muestreo de Creta: Chania, Rethymno, Heraklio, Lasithi.
Las muestras se llevaron vivas al laboratorio y se guardaron a -80°C hasta
el momento del
analisis. El ADN total se extrajo de cada individuo, siguiendo el
protocolo establecido por HUNT y PAGE (1992), operando algunas modificaciones
menores (BOUGA et al., 2003). La variación del
ADN mitocondrial se analizó mediante RFLP, sobre productos amplificados
por PCR. Dos juegos deiniciadores se utilizaron para amplificar los segmentos
génicos 16s rADN y CO I. Los iniciadores empleados para el segmento 16s
rADN fueron el par 5'-CAACATCGAGGTCGCAAACATC-3' y 3'-AGTTGGGACTATGTTTTCCATG-5'
(NIELSEN et al., 1994), y para el segmento CO I el par
5'GATTACTTCCTCCCTCATTA-3' y 3'-AATAAGCTGATAGGTCCTAA-5' (NIELSEN et al., 1999).
La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) (SAIKI et al., 1988) se
efectuó tal como esta descrita por BOUGA et al.
(2003), igual que las condiciones PCR. Los segmentos de mtADN amplificados
fueron digeridos con enzimas de restricción. Los enzimas informativos de
restricción empleados para el segmento génico 16 s rADN fueron
Ssp I, Dra I, Hinc II, EcoR I, Pst I y Alu I, y para el segmento génico
CO I fueron Sau3A I, Fok I, Bel I, Ssp I, BstU I y Xho I. Ulteriormente, los
segmentos digeridos se separaron electroforéticamente, sobre geles de
agar al 2 %, en tampón de 0,5X TBE teñido con bromuro de etidio y
vizualizados en luz UV. Los tamaños de los fragmentos de ADN se
compararon con el marcador PCR (Promega), aplicado sobre el mismo gel, y se
calcularon empleando el programa DNAfrag 3,03 (NASH, 1991). Una
letra, por orden de aparición, identificó los distintos modelos
de restricción. Ulteriormente, se definieron
genotipos compuestos para cada individuo de todos los modelos de
restricción de los dos segmentos de mtADN. Resultados Los
tamaños encontrados para los segmentos de mtADN, amplificados por la
técnica PCR, fueron de 964 bp y 1928 bp, para los segmentos
génicos 16 s rADN y,respectivamente, CO I.
Siete y seis enzimas de restricción tuvieron al menos un sitio de
reconocimiento en los segmentos amplificados 16 s rADN y, respectivamente, CO
I. Los modelos de fragmentación producidos por cada enzima de
restricción para los dos segmentos de mtADSN estan presentados en
las tablas I y II.
Comisión Permanente de Biología Apícola Tabla I
Evaluación del tamaño de los fragmentos (en pares basicos)
de todos los modelos de fragmentación observados en los segmentos
génicos de mtADN 16 s rADN, en la población estudiada 16s rADN
Sau3A I Ssp I Dra I Hinc II EcoR I Pst I Alu I A A A A A A A 548 628 557 598
492 621 572 416 336 407 366 472 343 392 -
Tabla II Evaluación del tamaño de los fragmentos (en pares
basicos) de todos los modelos de fragmentación en los segmentos
génicos de mtADN CO I, en la población estudiada CO I Sau 3A I
Fok I Bcl Ssp I Bstu I Xho I A A A A A B A 371 476 465 487 1028 616 349 425 326
277 658 412 280 127 237 264 370 28 -
La variación intrapoblacional se relevó, para el segmento
génico CO I, digerido con el enzima restrictivo BstU I, como se muestra
en la Figura 2.
Figura 2 - Modelos de restricción de los fragmentos
tras la digestión con el enzima BstU I, en las poblaciones de abejas
melíferas de (1-3) Chania, (4-6) Rethymno, (7-9) Heraklio, (10-12)
Lasithi. (vertical: marcador PCR)
Los dos haplotipos (genotipos compuestos) detectados en las poblaciones
estudiadas (las letras, por orden, se corresponden con el mismo orden de los
modelos de fragmentos presentados en las tablas I yII); la incidencia de los
haplotipos y el tamaño de la muestra aparecen en la Tabla III.El contenido de fibra de la semilla no es excesivo, pero se
estima que pueda constituir una fuente importante de minerales.
